Набор реагентов для выявления PНК вируса гепатита C (HCV) в клиническом материале методом… — инструкция и характеристики, РУ ФСР 2007/00156 | TenderMatch

Набор реагентов для выявления PНК вируса гепатита C (HCV) в клиническом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле "АмплиСенс® HCV-EPh" по ТУ 9398-028-01897593-2009 — инструкция и характеристики

РУ: ФСР 2007/00156 от 25.06.2007 · класс риска 3

Производитель: ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора (Россия)

Автоматически отфильтрованный фрагмент инструкции по применению (страницы, где похоже, что есть таблица технических характеристик) — не полный документ. Карточка РУ на портале Росздравнадзора →

Открытые закупки, где изделие проходит ТЗ

Сейчас открытых закупок, где изделие полностью проходит ТЗ, нет; список обновляется каждый день.

Построчная сверка ТЗ с характеристиками этого изделия и все закупки под ваши товары — в кабинете, 7 дней бесплатно.
Попробовать бесплатно

Текст инструкции: технические характеристики

--- стр. 3 ---
УТВЕРЖДЕНА 
Приказом Росздравнадзора 
от №
УТВЕРЖДАЮ 
Директор Федерального 
государственного учреждения науки 
«Центральный научно-исследова- 
гельский институт эпидемиологии» 
'Федеральной службы по надзору в 
сфере зафиты прав потребителей и 
благополучия человека
------ВД1.Покровский
2009 г.
ИНСТРУКЦИЯ
по применению набора реагентов 
для выявления РНК вируеа гепатита С (H C V ) в клиническом 
материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с 
электрофоретической детекцией продуктов амплификации в
агарозном геле
«АмплиСенс® HCV-EFh»


--- стр. 4 ---
ФОРМА КОМПЛЕКТАЦИИ.
Набор реагентов выпускается в 7 формах комплектации:
Форма 1 включает комплекты реагентов «РИБО-сорб» вариант 100, «РЕВЕРТА-L»
вариант 100, «ПЦР-комилект» вариант 100 R (пробирки 0,5 мл), «ЭФ» вариант 200.
Форма 2 включает комплекты реагентов «РИБО-сорб» вариант 100, «РЕВЕРТА-Е»
вариант 100, «ПЦР-комплект» вариант 100 R (пробирки 0,2 мл), «ЭФ» вариант 200.
Форма 3 включает комплекты реагентов «РИБО-преп» вариант 100, «РЕВЕРТА-Е»
вариант 100, «ПЦР-комплект» вариант 100 R (пробирки 0,5 мл), «ЭФ» вариант 200.
Форма 4 включает комплекты реагентов «РИБО-преп» вариант 100, «РЕВЕРТА-Е»
вариант 100, «ИЦР-комплект» вариант 100 R (пробирки 0,2 мл), «ЭФ» вариант 200.
Форма 5 включает комплект реагентов «ПЦР-комплект» вариант 100 R (пробирки 0,5 мл); 
Форма 6 включает комплект реагентов «ПЦР-комплект» вариант 100 R (пробирки 0,2 мл); 
Форма 7 включает комплект реагентов «ПЦР-комплект» вариант 200.
ВНИМАНИЕ! Заявленные аналитические характеристики набора реагентов при работе с 
формами 5, 6 и 7 гарантируются только в случае применения дополнительных комплектов 
реагентов «РИБО-сорб» или «РИБО-преп», «РЕВЕРТА-Е» и «ЭФ» производства ФГУП 
ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
СОСТАВ.
Комплект реагентов «РИБО-сорб» вариант 100 (ТУ 9398-004-01897593-2008) - комплект 
реагентов для выделения РНК/ДНК из клинического материала - включает:
Реактив Описание Объем (мл) Кол-во
Лизирующий раствор Прозрачная бесцветная 
жидкость* 45 1  флакон
Раствор для отмывки 1 Прозрачная бесцветная 
жидкость* 40 1  флакон
Раствор для отмывки 3 Прозрачная бесцветная 
жидкость 100 1  флакон
Раствор для отмывки 4 Прозрачная бесцветная 
жидкость 40 1  флакон
Сорбент Суспензия белого цвета 1,25 2 пробирки
РНК-буфер Прозрачная бесцветная 
жидкость 0,5 10 пробирок
Комплект реагентов рассчитан на выделение РНК из 100 проб, включая контроли.
Комплект реагентов «РИБО-преп» вариант 100 (ТУ 9398-071-01897593-2008) - комплект 
реагентов для выделения РНК/ДНК из клинического материала включает:
' При хранении лизирующего раствора, раствора для отмывки I и раствора для лизиса при температуре от 2 
до 8 °С возможно образование осадка в виде кристаллов.


--- стр. 5 ---
Реактив Описание Объем (мл) Кол-во
лизиса Прозрачная бесцветная 
жидкость* 30 1 флакон
преципитации Прозрачная бесцветная 
жидкость 40 1 флакон
отмывки 3 Прозрачная бесцветная 
жидкость 50 1 флакон
отмывки 4 Прозрачная бесцветная 
жидкость 20 1 флакон
Прозрачная бесцветная 
жидкость
1,2 8 пробирок
гентов рассчитан на выделение РНК из 100 проб, включая контроли. 
агентов «РЕВЕРТА-L» вариант 100 (ТУ 9398-005-01897593-2008) - комплект 
получения кДНК на матрице РНК включает:
^еактив Описание Объем (мл) Кол-во
Прозрачная бесцветная 
жидкость 0,01 10 пробирок
Прозрачная бесцветная 
жидкость 0,125 10 пробирок
Mlv) Прозрачная бесцветная 
жидкость 0,06 1 пробирка
Прозрачная бесцветная 
жидкость 1,2 2 пробирки
ентов рассчитан на проведение 120  реакций обратной транскрипции, включая
1гентов «ПЦР-комплект» вариант 100 R или вариант 200- комплект 
ЩР-амплификации кДНК HCV-  включает:
? Описание
«ПЦР-комплект»  
вариант 100 R
«ПЦР-комплект»  
вариант 200
Объём
(мл) Кол-во Объём
(мл) Кол-во
CV Прозрачная 
бесцветная жидкость
. . . . . . 1,1 1 пробирка
HCV
юск
Прозрачная 
бесцветная жидкость 0,005
110  пробирок 
объемом 0,5 
или 0,2  мл
— —
lue
11розрачная 
жидкость синего 
цвета
1,2 1 пробирка 1,2 2 пробирки
Твердое вещество 
белого цвета
— — 1,7 2 пробирки
заело Бесцветная вязкая 
жидкость 4,0 1 флакон 8,0 1 флакон
’К Прозрачная 
бесцветная жидкость 0,2 1 пробирка 0,2 1 пробирка
1 Трозрачная 
бесцветная жидкость 0,5 1 пробирка 0,5 1 пробирка
зтов вариант 100 R рассчитан на проведение 110 реакций амплификации.
1И.


--- стр. 12 ---
, в пробирки по 400 мкл раствора для преципитации, перемешать на вортексе. 
)ифугировать пробирки на микроцентрифуге в течение 5 мин при 13 тыс об/мин. 
ю отобрать надосадочную жидкость, не задевая осадок, используя вакуумный 
гель и отдельный наконечник на 200 мкл для каждой пробы, 
i в пробирки по 500 мкл раствора для отмывки 3, плотно закрыть крышки 
[О  промыть осадок, переворачивая пробирки 3-5 раз. Можно провести процедуру 
[енно для всех пробирок, для этого необходимо накрыть пробирки в штативе 
1Ы Ш КОЙ или другим штативом, прижать их и переворачивать штатив. 
)ифугировать при 13 тыс об/мин в течение 1-2 мин на микроцентрифуге.
30, не захватывая осадок, отобрать надосадочную жидкость, используя
1Й  отсасыватель и отдельный наконечник на 10 мкл для каждой пробы, 
в пробирки по 200 мкл раствора для отмывки 4, плотно закрыть крышки и 
ю промыть осадок, переворачивая пробирки 3-5 раз.
)ифугировать при 13 тыс об/мин в течение 1-2 мин на микроцентрифуге.
30, не захватывая осадок, отобрать надосадочную жидкость, используя
[й отсасыватель и отдельный наконечник на 10 мкл для каждой пробы.
'ь пробирки в термостат с температурой 65 °С на 5 мин для подсушивания 
ри этом крышки пробирок должны быть открыты).
в пробирки по 50 мкл РНК-буфера. Перемешать на вортексе. Поместить в 
г с температурой 65 °С на 5 мин, периодически встряхивая на вортексе. 
шфугировать пробирки при 13 тыс об/мин в течение 1 мин на 
[трифуге. Падосадочная жидкость содержит очищенные РНК и ДНК. Пробы 
постановке реакции обратной транскрипции и ПЦР.
ая РНК может храниться до 4 ч при температуре от 2 до 8 °С. Для длительного 
епарата необходимо отобрать раствор РНК, не захватывая осадок, перенести в 
зробирку и хранить в течение года при температуре не выше минус 68 °С.
СВЕДЕНИЕ РЕАКЦИИ ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИИ, ПЦР- 
[КАЦИИ.
1 в ЗОНЕ 2 - помещении для проведения ПЦР-амилификации).
ше реакции обратной транскринции . 
ем реакции - 20 мкл, объем РНК-пробы - 10 мкл).
5оты:


--- стр. 13 ---
IE! При работе с РНК необходимо использовать только одноразовые  
le расходные материалы, имеющие специальную маркировку «RNase-free»,  
».
i необходимое количество микропробирок на 0,5 (0,2) мл.
1ить реакционную смесь на 12 реакций. Для этого в пробирку с RT-mix внести 
T-G-mix-1, тщательно перемешать на вортексе, осадить капли с крышки
иному раствору добавить 6 мкл ревертазы (MMlv), перемешать на вортексе, 
аили с крышки пробирки.
иикропробирки по 10 мкл готовой реакционной смеси.
I наконечник с аэрозольным барьером, добавить 10 мкл РНК-пробы в 
с реакционной смесью. Осторожно перемешать.
пробирки в амплификатор (термостат) при температуре 37 °С на 30 мин.
/ю в реакции обратной транскрипции кДНК для последующей поетановки ПЦР 
! 2 раза ДНК-буфером (к 20 мкл кДНК отдельным наконечником добавить 
К-буфера).
парат кДНК можно хранить в течение 1 нед при температуре не выше  
1ЛИ в течение года при температуре не выше минус 68 °С.
le ПЦР-амилифиции.
*1 реакции - 25 мкл, обьем кДНК-пробы - 10 мкл).
; реагентов применяется «горячий старт», который обеспечивается  
нуклеотидов и Taq-полимеразы прослойкой воска. Плавление воска и  
не реакционных компонентов происходит только при 95 °С, что  
нижает количество неспецифически затравленных реакций.
ты.
а пробирок для проведения ПЦР.
ьзовании комплекта реагентов «ПЦР-комплект» вариант 100 R пункты 1 
ять не нужно.
воском для ПЦР прогреть в термостате при температуре 95 °С до полного
1Я.
[а дно микропробирок для амплификации по 5 мкл ПЦР-смеси-1 HCV.  
1вить по капле (примерно 10-15  мкл) расплавленного воска так, чтобы он 
накрыл жидкость, закрыть крышки пробирок, подписать на каждой 
г название инфекции. Пробирки с разлитой ПЦР-смесью-1 HCV и воском 
гть при температуре от 2 до 8 °С в течение 1  нед.


--- стр. 14 ---
ать необходимое количество подготовленных в п. 2 пробирок, или пробирок с ПЦР- 
ю-1-R ЯСКдля амплификации кДНК исследуемых и контрольных проб, 
верхность воска внести по 10 мкл ПЦР-смеси-2 blue, при этом она не должна 
[иваться под воск и смешиваться с ПЦР-смесью-1-R HCV.
/ добавить по капле минерального масла для ПЦР (примерно 25 мкл).
дение ПЦР-амплификации.
юдготовленные для 1ПДР пробирки. Под масло или непосредственно на масло, 
!уя наконечники с аэрозольными барьерами, внести по 10 мкл кДНК-проб,  
шых в реакции обратной транскрипции.
1ть контрольные реакции амплификации;
нательный контроль (К-) - вместо кДНК-пробы внести в подготовленную 
зрку 10 мкл ДНК-буфера;
«(ительный контроль (К+) - внести в пробирку 10 мкл ПКО кДНК HCV.
гь на амплификаторе нужную программу (см. табл. 1, 2 и 3). Когда температура в 
достигнет 95 °С (режим паузы) поставить пробирки в ячейки амплификатора и нажать 
родолжения программы.
[дуется перед постановкой в амплификатор осадить капли со стенок пробирок 
ттрифугированием на вортексе (1-3 с).
Таблица 1.
Программа амплификации кДНК HCV
\мплификаторы с активным регулированием (по раствору в пробирке)
«Терцик»
(«ДНК-Т ехнология»)
«Gradient Palm Cycler» 
(«Corbett Research»)
[ИКЛ температура время циклы температура время циклы
0 95 °С пауза 95 °C пауза
1 95 °С 5 мин 1 95 °C 5 мин 1
2 95 °С Юс 95 °C 20 c
67 °С Юс 42 67 °C 20 c 42
72 °С Юс 72 °C 20 c
3 72 °С 1  мин 1 72 °C 1  мин 1
4 10 °с хранение 4°C хранение


--- стр. 16 ---
грудником лаборатории, не производящим манипуляиий в зоне 1 и зоне 2.
ение рабочих растворов и агарозного геля.
вить рабочий электрофорезный буфер. В мерный цилиндр влить 25 мл трис-  
го буфера (ТБЕ) коииеигрироваииого с бромидом этидия, довести 
[ированной водой до 500 мл, закрыть цилиндр парафильмом и перемешать. 
гНИЕ! Бромид этидия - канцерогенное соединение, поэтому при работе с ним 
соблюдать правила безопасности; работать только в перчатках, избегать 
И Я  на кожу и слизистые, при попадании на кожу или слизистые тщательно 
. соответствующий участок водой.
тенты, содержащие этидия бромид, перед утилизацией следует подвергать 
щой обработке (см. раздел «Обеззараживание»).
для электрофореза ДНК из одного флакона пересыпать в стеклянную колбу из 
)йкого стекла на 250 мл. Налить 100 мл рабочего буфера, перемещать вращением 
I плавить в микроволновой печи до полного растворения агарозы. Время 
1я агарозы в микроволновой печи мощностью 800 Вт при ее загруженности 1  
- 1,5 мин. Если в микроволновую печь мощностью 800 Вт ставится 5 колб с 
, время плавления увеличивается до 5 мин. Вынуть колбу с расплавленной 
из микроволновой печи, аккуратно перемешать, вращая колбу. После этого 
'местить колбу с агарозой в микроволновую печь на 1,5 мин (при мощности 800 
ести агарозу до кипения. Вынуть колбу из микроволновой печи и остудить 
вращая колбу, до температуры 65-70 °С.
ть столик для заливки гелей, залить расплавленный гель в форму камеры, 
зть гребенки, не касаясь дна формы, на расстоянии не менее 3 см друг от друга.
I геля должна быть около 0,6 см.
шного застывания геля (30 мин при комнатной температуре), осторожно вынуть 
гребенки, не повредив лунки. Поместить подложку с готовым гелем в камеру, 
)лжны располагаться ближе к отрицательному электроду. ДНК, соответственно, 
I к положительному. Залить в камеру готового буфера столько, чтобы он 
3 гель на 5 мм еверху.
16 0 Т Ы .
и с продуктами амплификации выетавить в щтатив последовательно, отобрать 
тоя масла по 10-15 мкл проб и внести в лунки геля (если для нанесения разных 
юльзуется один и тот же наконечник, то его необходимо промывать буфером из 
после нанесения каждой пробы). В каждом ряду дорожек геля должен быть 
ьно представлен К+ и, желательно, маркер молекулярных масс ДНК.


--- стр. 17 ---
ь камеру к источнику тока, соблюдая полярность (ДНК движется к 
зному электроду), и включить источник. При использовании камеры «SE-2» 
) и источника питания «Эльф-4» («ДНК-Технология») параметры источника 
: напряжение 250 В, стабилизация по напряжению, время электрофореза - 18- 
гимальная напряженность электрического поля при этом составляет 10 В/см. 
ении времени электрофореза (краситель ксиленцианол при этом пройдет 
[оловину длины геля - 1,5 см), выключить источник тока, перенести гель на 
1инатор, расположив полосы горизонтально лунками вверх. Получить 
е геля на компьютере с помощью видеосистемы, отметив порядок нанесения, 
13у данных.
При просматривании геля и фотографировании глаза и лицо должны  
1Ы маской или стеклянной пластиной!
ЬТАТОВ.
[ьтатов ПЦР-анализа проводится по наличию или отсутствию на 
1мме специфических полос амплифицированной кДНК (см. табл. 4).
нфических полос амплифинироваииых фрагментов кДНК:
- 240 ПЛ1.
HGV+HDV)-rtc -  440 и.и.
Таблица 4.
льтаты цостановки контролей различных этапов ПЦР-анализа
Ы 1Ы Й Контролируемый этап 
ПЦР-анализа
Специфическая полоса на 
электрофореграммеец 240 п.н. 440 п.н.
Выделение РНК Есть Есть
Выделение РНК Нет Есть
ПЦР Нет Нет
НЦР Есть Нет
соответствующей положительному контролю этапа выделения (ПК),
ь две яркие светящиеся оранжевые полосы; специфическая - на уровне 
юса внутреннего контрольного образца - на уровне 440 п.н. 
соответствующей отрицательному контролю этапа выделения (ОК),
только полоса ВКО на уровне 440 и.и.
гоответствующей положительному контролю этапа ПЦР (К+), должна 
ецифическая светящаяся оранжевая полоса на уровне 240 п.н. 
оответствующей отрицательному контролю этапа ПЦР (К-) не должно 
полос.
ж .


--- стр. 18 ---
1ьными считаются образцы, которые содержат специфическую светящуюся 
'ровне 240 п.н. большей или меньшей интенсивности, независимо от наличия 
:твия полосы внутреннего контрольного образца. Полоса внутреннего 
го образца может отсутствовать в пробах с высокой концентрацией РНК HCV. 
ьными считаются образцы, которые содержат только полосу 440 п.н.  
и меньшей интенсивности.
)с 240 п.н. и 440 п.н. в дорожках могут наблюдаться нечеткие размытые 
тмер-димеров, которые располагаются ниже уровня 100 нуклеотидных пар.
1алпза не подлежат учету в еледуюпшх елучаях:
таты анализа контрольных точек не совпадают с приведенными в таблице 4, 
'вующий этап анализа следует переделать.
ожке какой-либо из проб отсутствуют обе полосы, и 240 п.н. и 440 п.н., 
1ализа по данной пробе считается недействительным, необходимо повторить 
[е этой клинической пробы с первого этапа проведения анализа (выделение 
ожные причины: ошибка в процедуре обработки клинического материала, 
с  потере РНК/ДНК или ингибированию ОТ и/или ПЦР.
)жке какой-либо из проб отсутствуют обе полосы, и 240 п.н. и 440 п.н., и 
)т неспецифические полосы на разных уровнях, результат анализа по данной 
гается недействительным, необходимо повторить исследование этой 
i пробы, начиная с этапа проведения ПЦР-амплификации. Возможные 
'сутствие «горячего старта» или неверный температурный режим в ячейках 
эра.
шецифической полосы 240 п.н. в любом из отрицательных контрольных 
К, К-) указывает на контаминацию реактивов или проб. Требуется повторить 
с первого этапа анализа (выделение РНК), а также предпринять меры по 
юточника контаминации.
ВАННЕ.
дние биоматериалов и реагентов проводят для каждой стадии отдельно, 
норазовую пластиковую посуду (пробирки, наконечники), колбы-ловушки 
отсасывателей на 20-24 ч в специальные контейнеры, содержащие 
'ющий 0,2% раствор ДП-2Т.
le гели и буфер из камеры помещают в пластиковую емкость на 5 л с плотно 
дейся крышкой. На 1  л обезвреживаемых реагентов добавляют 1  л 0,5 М 
тия перманганата и затем 1  л 2,5 М соляной кислоты. Аккуратно 
эт и оставляют при комнатной температуре на 4-6 ч. Для нейтрализации