Диагностический буферный раствор для электрофоретического фракционирования белков "СИМАЦЕЛЬ Н" по ТУ 9398-002-09807247-2009 — инструкция и характеристики
Открытые закупки, где изделие проходит ТЗ
Сейчас открытых закупок, где изделие полностью проходит ТЗ, нет; список обновляется каждый день.
Построчная сверка ТЗ с характеристиками этого изделия и все закупки под ваши товары — в кабинете, 7 дней бесплатно.
Попробовать бесплатно
Текст инструкции: технические характеристики
--- стр. 3 --- М ет о д ы элект роф ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я Система Scan ion предназначена для микрозонального электрофореза биологических макромолекул на ацетате целлюлозы. Для Scanion разработаны методы и реагенты, обеспечивающие разделение в электрическом поле и последующее выявление фракций белков сыворотки крови, липопротеидов и гемоглобина. Система для электрофореза Scanion рекомендована для использования в клинико- диагностических лабораториях. §1.БЕЛКИ СЫВОРОТКИ КРОВИ L L П о д г о т о в к а э л е к т р о ф о р е т и ч е с к о й к а м е р ы к р а б о т е Отсоедините электрический шнур электрофоретической (ЭФ) камеры от внешнего источника электропитания. Снимите крышку и уберите поддерживающий мостик из ЭФ камеры. Налейте в ЭФ камеру 250-300 мл диагностического буферного раствора «Симацель Н» (поставляется готовый для использования раствор). Приподнимите один край камеры невысоко над столом, так чтобы буферный раствор равномерно распределился между катодным и анодным отсеками камеры. Когда ЭФ камера расположена горизонтально на столе, ее внутренняя перегородка, разделяющая катодное и анодное отделение, не позволяет смешиваться буферу между отделениями. Убедитесь, что уровень буферного раствора в каждом отделении камеры примерно одинаков. Аккуратно промокните капли буферного раствора на перегородке ЭФ камеры, 1 .2 , П о д д е р ж и в а ю щ и й м о с т и к ( д е р ж а т е л ь м е м б р а н ) ® Убедитесь, что размер и перфорация ацетат-целлюлозных (АЦ) мембран соответствуют размеру и зубцам перекладины поддерживающего мостика. Натяжение АЦ мембраны регулируется при помощи подвижной перекладины мостика. 1 .3 . П о д г о т о в к а Л Ц м е м б р а н Наполните стеклянную емкость небольшим количеством диагностического буферного раствора «Симацель Н». Подпишите каждую используемую АЦ мембрану. Для пропитывания АЦ мембран буферным раствором поместите их на поверхность раствора буфера, постепенно погрузив их полностью на 5-10 мин. При быстром погружении в порах мембран может остаться воздух Для пропитывания мембран рекомендуется использовать каждый раз свежий раствор электродного буфера. Электродный буфер может быть использован в камере для электрофореза неоднократно. Извлеките АЦ мембрану из буфера. Поместите ее между двумя листами фильтровальной бумаги (Blotting Paper СВ 100) и легким нажатием удалите избыток буфера. --- стр. 4 --- М ет о д ы элект роф ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я Разместите АЦ мембрану на поддерживающем мостике. Для этого сначала закрепите один край АЦ мембраны на подвижной перекладине мостика, затем натяните мембрану и закрепите другой край на противоположной перекладине. Повторите процедуру для следующей АЦ мембраны, меняя фильтровальную бумагу. На поддерживающем мостике одновременно может быть установлено до трех АЦ мембран. Не допускайте высыхания АЦ мембран. О высыхании свидетельствует появление на мембране белых пятен. В этом случае пропитывание мембран буфером следует повторить. Перенесите поддерживающий мостик в камеру. Проследите, чтобы концы АЦ мембран были погружены в буферный раствор. 1 .4 . Н а н е с е н и е и с с л е д у е м ы х о б р а з ц о в Для нанесения образцов необходимо использовать трафарет - диспокард и точно соблюдать методику. I Пометьте каждый ряд диспокарда в соответствии с маркировкой мембран. Диспокард может быть микро, полу-микро и макро формата. Каждому формату диспокарда соответствует апликатор определенного размера. Для электрофореза белков сыворотки крови используются диспокард микро и полу микро формата. Для нанесения исследуемых образцов на диспокард используйте микропипетки с меняющимся объемом. На микро или полу-микро диспокард нанесите по 10-12 мкл образца сыворотки крови в каждую ячейку. На макро диспокард может быть нанесено 20 -24 мкл образца. Для нанесения каждого следующего образца меняйте наконечник пипетки. Извлекая пипетку из пробирки, снимите излишки сыворотки с внешней поверхности наконечника пипетки, проведя наконечником вдоль стенки пробирки. Нанесите исследуемые образцы в соответствующие ячейки диспокарда. Теперь диспокард подготовлен для взятия образцов апликатором и нанесения их на АЦ мембрану. Установите апликатор в ячейки диспокарда. Каждому зубцу апликатора соответствует определенная ячейка диспокарда. Держите апликатор вертикально над ячейками диспокарда и осторожно нажмите на него. При этом материал будет взят пористой поверхностью зубцов апликатора. Сделайте первую пробную апликацию материала на лист фильтровальной бумаги или ) на край диспокарда в стороне от ячеек. Повторите взятие материала апликтором с диспокарда и сделайте следующую апликацию образцов на АЦ мембране. Для этого вставьте апликатор в пазы поддерживающего мостика, установленного в ЭФ камере. Пазы поддерживающего мостика маркированы точками. Выбор одного из них определит место старта электрофореза: (****)_ только для перфорированных мембран 57x145 мм Boskamp - ддя перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp: белки сыворотки микро и полу-микро формат ^ _ ддя перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp: белки сыворотки полу- микро, макро и HDV (* ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp Установите апликатор у катодного края АЦ мембраны в пазы поддерживающего мостика, сделайте апликацию образцов на мембрану. Время контакта апликатора с АЦ мембраной составляет приблизительно 3-5 сек. Пользуйтесь только сухим апликатором. После каждого последующего использования апликатор необходимо аккуратно промыть. --- стр. 5 --- 7.5. П р о в е д е н и е э л е к т р о ф о р е з а Закройте ЭФ камеру. Установите нужное напряжение. Подключите камеру к источнику питания. Проверьте величину силы электротока. Перед началом новой разгонки поменяйте полярность электродов в камере, если такая возможность предусмотрена, или перемешайте буферный раствор в камере, и удалите конденсат, скопившийся на перекладинах поддерживающего мостика. Замечание: Напряжение на электродах автоматически снимается при неплотном закрьггии крышки ЭФ камфь! Правильно выберите напряжение и время разгонки: Микро АР 8-АР6М-АР6 200 В 20-25 мин Полу-микро AP4-AP4MS-AP4M 200 В 25-30 мин Макро АР4 200 В 30-35 мин Как правило, начальная сила тока не должна превышать 5 мА на одну мембрану. По истечении времени разделения отключите источник питания, снимите крышку с камеры. Проследите, чтобы капли конденсата не попали на АЦ мембраны. Достаньте поддерживаюший мостик из камеры, держа его в горизонтальном положении. После окончания электрофореза мостик необходимо промыть и тщательно высушить. Обсушите крышку, закройте камеру. Помните, что перед каждой процедурой электрофореза необходимо менять полярность электродов (если такая возможность предусмотрена) или перемешивать буферный раствор в ЭФ камере. М ет о д ы элект роф ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я L 6 , О к р а ш и в а н и е Во время проведения электрофореза подготовьте емкость объемом приблизительно 150 мл с красящим раствором "Red Ponceau S ". После отключения электротока осторожно перенесите АЦ мембраны в красящий раствор на 5 - 10 минут. Снимите мембраны с поддерживающего мостика одну за другой. Отрежьте концы мембраны по линии перфорации. Погрузите мембраны в емкость с красящим раствором и оставьте на 10 мин. Время от времени встряхивайте емкость. После каждых 10 процедур красящий раствор необходимо менять, 7.7. О б е с ц в е ч и в а н и е ф о н а и п р о с в е т л е н и е м е м б р а н Пока мембраны окрашиваются, приготовьте стеклянную посуду с 200-300 мл раствора "Destaining and Clearing", который одновременно является отмывающим и просветляющим. По окончании времени окраски извлеките мембраны из красителя и погрузите их в отмывающий раствор. Покачивайте емкость с раствором для достижения более быстрой отмывки фона мембраны. Замените раствор, когда его цвет станет одинаковым с цветом мембраны. Повторяйте процедуру до полного обесцвечивания мембраны. Процесс отмывки фона от краски может быть ускорен, если использовать шейкер. Обьиная процедура отмывки для АЦ мембран: мембрана с голубым 2-3 погружения и ок. 3 мин. разделительным листом общего пребывания в растворе --- стр. 8 --- HOSPTTFV П 1 АГМг»вХ1/-с М ет о д ы элект роф ореза- LllAljINUa А iC!S Р у к о в о дств о п о л ь зо в а т ел я §2. ЛИПОПРОТЕИДЫ ОКРАСКА: SUDAN BLACK (ЧЕРНАЯ) ВРЕМЯ 2 -4 ч а с а , или SUDAN RED ТВ (КРАСНАЯ) 2.7. П р и г о т о в л е н и е б у ф е р а К 1000 мл диагностического буферного раствора "Симацель Н" добавить 1 флакон реагента L . В зависимости от температуры встряхивайте в течение 20-50 сек до полного растворения. При хранении буферного раствора при 4° С его можно использовать дважды. 2 .2 , П о д г о т о в к а э л е к т р о ф о р е т и ч е с к о й к а м е р ы к р а б о т е . т Отсоедините электрический шнур ЭФ камеры от внешнего источника электропитания. Снимите крышку и уберите поддерживающий мостик из ЭФ камеры. Налейте в ЭФ камеру 250-300 мл приготовленного диагностического буферного раствора «Симацель Н + Л». Приподнимите один край камеры невысоко над столом, так чтобы буферный раствор равномерно распределился между катодным и анодным отсеками камеры. Когда ЭФ- камера расположена горизонтально на столе, ее внутренняя перегородка, разделяющая катодное и анодное отделение, не позволяет смешиваться буферу между отделениями. Убедитесь, что уровень буферного раствора в каждом отделении камеры примерно одинаков. Аккуратно промокните капли буферного раствора на перегородке ЭФ камеры. 23, Поддерживающий мостик (держатель мембран). Убедитесь, что размер и перфорация АЦ мембран соответствуют размеру и зубцам перекладины поддерживающего мостика. Натяжение АЦ мембраны регулируется при помощи подвижной перекладины мостика. 2 ,4 , П о д г о т о в к а Л Ц - м е м б р а н , Наполните стеклянную емкость небольшим количеством диагностического буферного раствора «Симацель Н+Л». Подпишите каждую используемую АЦ мембрану. Для пропитывания АЦ мембран буферным раствором поместите их на поверхность раствора буфера, постепенно погрузив их полностью на несколько минут. При быстром погружении в порах мембран может остаться воздух. Для пропитывания мембран рекомендуется использовать каждый раз свежий раствор электродного буфера. Извлеките АЦ мембрану из буфера. Поместите ее между двумя листами фильтровальной бумаги (Blotting Paper СВ 100) и легким нажатием удалите избыток буфера. Разместите АЦ мембрану на поддерживающем мостике. Для этого сначала закрепите один край АЦ мембраны на подвижной перекладине мостика, затем натяните мембрану и закрепите другой край на противоположной перекладине. Повторите процедуру для следующей АЦ мембраны, меняя фильтровальную бумагу. На поддерживающем мостике одновременно может быть установлено от 1 до 3 АЦ мембран. --- стр. 9 --- Перенесите поддерживающий мостик в камеру. Проследите, чтобы концы АЦ мембран были погружены в буферный раствор. М ет о д ы элект ооЛ ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я 2.5. Н а н е с е н и е и с с л е д у е м ы х о б р а з ц о в Для нанесения образцов строго необходимо использовать трафарет - Диспокард и точно соблюдать методику. Для исследования используйте свежую сыворотку или ЭДТА плазму крови. Пометьте каждый ряд диспокарда в соответствии с маркировкой мембран. Диспокард может быть микро, полу-микро и макро формата. Каждому формату диспокарда соответствует апликатор определенного размера. Для электрофореза липопротеидов сыворотки крови используются диспокард полу-микро формата. Для нанесения исследуемых образцов на диспокард используйте микропипетки с I меняющимся объемом. На полу-микро диспокард нанесите по 10-12 мкл образца сыворотки крови в каждую ячейку. (На макро диспокард может быть нанесено 20 -24 мкл образца). Для нанесения каждого следующего образца меняйте наконечник пипетки. Извлекая пипетку из пробирки, снимите излишки сыворотки с внешней поверхности наконечника пипетки, проведя наконечником вдоль стенки пробирки. Нанесите исследуемые образцы в соответствующие ячейки диспокарда. Теперь диспокард подготовлен для взятия образцов апликатором и нанесения их на АЦ-мембрану. Установите апликатор в ячейки диспокард. Каждому зубцу апликатора соответствует определенная ячейка диспокарда. Держите апликатор вертикально над ячейками диспокарда и осторожно нажмите на него. При этом материал будет взят пористой поверхностью зубцов апликатора. Сделайте первую пробную апликацию материала на лист фильтровальной бумаги или на край диспокарда в стороне от ячеек. Повторите взятие материала апликтором с диспокарда и сделайте следующую апликацию образцов на АЦ мембране. Для этого вставьте апликатор в пазы поддерживающего мостика, установленного в ЭФ камере. Пазы поддерживающего мостика маркированы точками. Выбор одного из них определит место старта электрофореза: (****)_ только для перфорированных мембран 57x145 мм Boskamp , ^ _ ддя перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp; липопротеиды или белки сыворотки микро и полу-микро формат (** ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp: белки сыворотки полу микро, макро и HDV (* ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp Установите апликатор у катодного края АЦ-мембраны в пазы поддерживающего мостика, сделайте апликацию образцов на мембрану. Время контакта апликатора с АЦ-мембраной составляет приблизительно 3-5 сек. Возьмите апликатором те же образцы с диспокард еще раз и повторите апликацию на АЦ мембрану. Повторная апликация обеспечит нанесение большего количества образца, что необходимо для прокрашивания разделенных фракций липопротеидов. Пользуйтесь только сухим апликатором. При каждом последующем использовании апликатора (и для хранения) его необходимо аккуратно промыть. 2.6. П р о в е д е н и е э л е к т р о ф о р е з а Закройте ЭФ-камеру. Установите нужное напряжение. Подключите камеру к источнику питания. Проверьте величину силы электротока. Перед началом новой разгонки поменяйте полярность --- стр. 10 --- электродов в камере, если такая возможность предусмотрена, или перемешайте буферный раствор в камере и удалите конденсат, скопившийся на перекладинах поддерживающего мостика. Замечание: Напряжение на электродах автоматически снимается при неплотном закрытии крышки ЭФ -камеры. Правильно выберите напряжение и время разгонки: Микро АР 8-АР6М-АР6 180 В 35-40 мин Полу-микро AP4-AP4MS-AP4M 180 В 40-45 мин Макро АР4 180 В 45-50 мин Как правило, начальная сила тока не должна превышать 5 мА на одну мембрану. По истечении времени разгонки отключите источник питания, снимите крышку с камеры. Проследите, чтобы капли конденсата не попали на АЦ мембраны. Достаньте поддерживающий мостик из камеры, держа его в горизонтальном положении. После окончания электрофореза мостик необходимо промьггь и тщательно высушить. Обсушите крьшдку, закройте камеру. Помните, что перед каждой процедурой электрофореза необходимо менять полярность электродов или перемешивать буферный раствор в ЭФ камере. 2.7. О к р а ш и в а н и е 2.7.1. Краситель SUDAN BLACK (ОКРАСКА ЧЕРНАЯ) За 20-30 минут до конца разгонки отмерьте мерным цилиндром и смешайте 160 мл красителя Sudan Black и 40 мл раствора щелочи (упакованы вместе в наборе 50.55). Полученный раствор налейте в ванночку. Снимите мембраны с поддерживающего мостика одну за другой. Отрежьте концы мембраны по линии перфорации. Погрузите мембраны в емкость с красящим раствором. Время окрашивания может варьировать от 40 мин. до 4 часов. Время от времени встряхивайте емкость. Более долгое время окрашивания не мешает результату, но усиливает окрашивание фона мембраны. Красящий раствор готовят заново перед каждой процедурой окрашивания фракций липопротеидов. Ф 2.7.2. Краситель SUDAN RED 7В (ОКРАСКА КРАСНАЯ) За 20-30 минут до конца разгонки отмерьте мерным цилиндром и смешайте 160 мл красителя Sudan Red 7В и 40 мл раствора щелочи (упакованы вместе в наборе). Полученный раствор налейте в ванночку. Снимите мембраны с поддерживающего мостика одну за другой. Отрежьте концы мембраны по линии перфорации. Погрузите мембраны в емкость с красящим раствором. Время окрашивания может варьировать от 25 мин. до 40 мин. Время от времени встряхивайте емкость. Более долгое время окрашивания не мешает результату, но усиливает окрашивание фона мембраны. Красящий раствор готовят заново перед каждой процедурой окрашивания фракций липопротеидов. 2 .8 . О б е с ц е е ч и в а н и е ф о н а По истечении времени окрашивания извлеките мембраны из красящего раствора, аккуратно промойте их под струей чистой воды кончиками пальцев для удаления остатков преципитированного красителя. М ет о д ы элект роф ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я 10 --- стр. 14 --- _ М ет о д ы элект роф ореза HQSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я §3. ГЕМОГЛОБИНЫ 3 .1 . П р и г о т о в л е н и е г е м о л и з а т а Гемолиз эритроцитов дистиллированной водой (количественный метод): Гемолиз образцов достигается добавлением дистиллированной воды. 1-3-4 мл крови с гепарином центрифугируйте в течение 10 мин. при 3000-3500 об.мин. (либо с другим антикоагулянтом). 2 - Удалите по возможности полностью плазму и белые частицы стромы с поверхности осадка. 3 - К 1 мл компактного осадка эритроцитов добавьте 2,5 мл дистиллированной воды. 4 - Перемешивайте на вортексе в течении 5 мин. Гемолиз с толуолом (количественный метод): 1 - 3-4 мл крови с гепарином центрифугируйте в течение 10 мин. при 3000-3500 об.мин. (либо с другим антикоагулянтом). 2 - Удалите по возможности полностью плазму и строму белых клеток с поверхности осадка. 3 - Ресуспендируйте взвесь эритроцитов в 4-5 мл физиологического раствора. 4 - Центрифугируйте вновь в течение 10 мин. при 3000-3500 об.мин. Удалите надосадочную жидкость. 5 - Повторите два раза шаги 3 и 4. 6 - К 1 мл компактного осадка эритроцитов добавьте 2 мл дистиллированной воды и 0,5 мл толуола. 7 - Перемешивайте на вортексе в течении 5 мин. 8 - Центрифугируйте в течение 10 мин. при 4000-4500 об.мин. 9 - Отберите надосадочную жидкость, состоящую из толуола и лизированных эритроцитов. 10 - Профильтруйте. При необходимости храните в течение 48 часов при температуре 4 * ^ С . 3 .2 , П о д г о т о в к а п р о б Приготовьте гемолизат, используя вышеописанный количественный метод (с толуолом). Определите концентрацию гемоглобина в гемолизате. Если концентрация гемоглобина слишком высокая, разбавьте гемолизат дистиллированной водой до концентрации 10 г/дл. 3 .3 . П о д г о т о в к а э л е к т р о ф о р е т и ч е с к о й к а м е р ы к р а б о т е Отсоедините электрический шнур ЭФ-камеры от внешнего источника электропитания. Снимите крышку и уберите поддерживающий мостик из ЭФ-камеры. Налейте в ЭФ-камеру 250-300 мл электродного буфера «Симацель Гб» (поставляется готовый для использования раствор). Приподнимите один край камеры невысоко над столом так, чтобы буферный раствор равномерно распределился между катодным и анодным отсеками камеры. Когда ЭФ-камера расположена горизонтально на столе, ее внутренняя перегородка, разделяющая катодное и анодное отделения, не позволяет смешиваться буферу между отделениями. Убедитесь, что уровень буферного раствора в каждом отделении камеры примерно одинаков. Аккуратно промокните капли буферного раствора на перегородке ЭФ-камеры. 14 --- стр. 15 --- М ет о д ы элект роф ореза HOSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я 3 .4 . П о д д е р ж и в а ю щ и й м о с т и к ( д е р ж а т е л ь м е м б р а н ) Убедитесь, что размер и перфорация ацетат-целлюлозных (АЦ) мембран соответствуют размеру и зубцам перекладины поддерживающего мостика. Натяжение АЦ-мембраны регулируется при помощи подвижной перекладины мостика. 3 .5 . П о д г о т о в к а А Ц - м е м б р а н Наполните стеклянную емкость небольшим количеством электродного буфера «Симацель Гб». Подпишите каждую используемую АЦ-мембрану. Для пропитывания АЦ-мембран буферным раствором поместите их на поверхность раствора буфера, постепенно погрузив их полностью на 5- 10 мин. При быстром погружении в порах мембран может остаться воздух. Для пропитывания мембран рекомендуется использовать каждый раз свежий раствор электродного буфера. Электродный буфер можно использова в камере для электрофореза неоднократно. Извлеките АЦ-мембрану из буфера. Поместите ее между двумя листами фильтровальной бумаги (Blotting Paper СВ 100) и легким нажатием удалите избыток буфера. Разместите АЦ-мембрану на поддерживающем мостике. Для этого сначала закрепите один край АЦ-мембраны на подвижной перекладине мостика, затем натяните мембрану и закрепите другой край на противоположной перекладине. Повторите процедуру для следующей АЦ-мембраны, меняя фильтровальную бумагу. На поддерживающем мостике одновременно может быть установлено от 1 до 3 АЦ-мембран. Не допускайте высыхания АЦ-мембран. О высыхании свидетельствует появление на пластинке белых пятен. В этом случае пропитывание мембран буфером следует повторить. Перенесите поддерживающий мостик в камеру. Проследите, чтобы концы АЦ-мембран были погружены в буферный раствор. 3 .6 . Н а н е с е н и е и с с л е д у е м ы х о б р а з ц о в Для нанесения образцов строго необходимо использовать трафарет - Диспокард и точно соблюдать методику. Пометьте каждый ряд диспокарда в соответствии с маркировкой мембран. Диспокард может быть микро, полу-микро и макро формата. Каждому формату диспокарда соответствует апликатор определенного размера. Для нанесения исследуемых образцов на диспокард используйте микропипетки с меняющимся объемом. На микро или полу-микро диспокард нанесите по 10-12 мкл образца гемолизата крови в каждую ячейку. (На макро диспокард может быть нанесено 20 — 24 мкл образца). Для нанесения каждого следующего образца меняйте наконечник пипетки. Извлекая пипетку из пробирки, снимите излишки гемолизата с внешней поверхности наконечника пипетки, проведя наконечником вдоль стенки пробирки. Нанесите исследуемые образцы в соответствующие ячейки диспокарда. Теперь диспокард подготовлен для взятия образцов апликатором и нанесения их на АЦ-мембрану. Установите апликатор в ячейки диспокарда. Каждому зубцу апликатора соответствует определенная ячейка диспокарда. Держите апликатор вертикально над ячейками диспокарда и осторожно нажмите на него. При этом материал будет взят пористой поверхностью зубцов апликатора. Сделайте первую пробную апликацию материала на лист фильтровальной бумаги или 15 --- стр. 16 --- на край диспокарда в стороне от ячеек. Повторите взятие материала апликтором с диспокарда и сделайте следующую апликацию образцов на АЦ-мембране. Для этого вставьте апликатор в пазы поддерживающего мостика, установленного в ЭФ-камере. Пазы поддерживающего мостика маркированы точками. Выбор одного из них определит место старта электрофореза; (****) - только для перфорированных мембран 57x145 мм Boskamp (*** ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp: микро и полу-микро формат (** ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp: полу- микро, макро и HDV (* ) - для перфорированных мембран 57x130 мм Pratiga и Boskamp Установите апликатор у катодного края АЦ-мембраны в пазы поддерживающего мостика, сделайте апликацию образцов на мембрану. Время контакта апликатора с АЦ-мембраной составляет приблизительно 3-5 сек. Пользуйтесь только сухим апликатором. При каждом последующем использовании апликатора (и для хранения) его необходимо аккуратно промьггь. ® 3 .7 . П р о в е д е н и е э л е к т р о ф о р е з а Закройте ЭФ-камеру. Установите нужное напряжение. Подключите камеру к источнику питания. Проверьте величину силы электротока. Перед началом новой разгонки поменяйте полярность электродов в камере, если такая возможность предусмотрена, или перемешайте буферный раствор в камере и удалите конденсат, скопившийся на перекладинах поддерживающего мостика. Замечание: Напряжение на электродах автоматически снимается при неплотном закрытии крышки ЭФ-камерь1 Правильно выберите напряжение и время разгонки: Микро АР 8-АР6М-АР6 300 В 30-35 мин Полу-микро AP4-AP4MS-AP4M 300 В 35-40 мин Макро АР4 300 В 45-50 мин Как правило, начальная сила тока не должна превышать 5 мА на одну мембрану. ^ По истечении времени разделения отключите источник питания, снимите крышку с камеры. Проследите, чтобы капли конденсата не попали на АЦ-мембраны. Достаньте поддерживающий мостик из камеры, держа его в горизонтальном положении. После окончания электрофореза мостик необходимо промьггь и тщательно высушить. Обсушите крышку, закройте камеру. Помните, что перед каждой процедурой электрофореза необходимо менять полярность электродов или перемешивать буферный раствор в ЭФ-камере. М ет о д ы элект роф ореза HQSPITEX DIAGNOSTICS Р ук ов одств о п о л ь зо в а т ел я 16