Набор реагентов для выявления ДНК вируса герпеса человека 6 типа методом полимеразной… — инструкция и характеристики, РУ ФСР 2012/13929 | TenderMatch

Набор реагентов для выявления ДНК вируса герпеса человека 6 типа методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (РеалБест ДНК ВГЧ-6) по ТУ 9398-283-23548172-2012 — инструкция и характеристики

РУ: ФСР 2012/13929 от 25.09.2012 · класс риска 2б

Производитель: АО "Вектор-Бест" (Россия)

Вид изделия: Герпесвирус человека 6 тип нуклеиновая кислота ИВД, набор, анализ нуклеиновых кислот

Автоматически отфильтрованный фрагмент инструкции по применению (страницы, где похоже, что есть таблица технических характеристик) — не полный документ. Карточка РУ на портале Росздравнадзора →

Открытые закупки, где изделие проходит ТЗ

Сейчас открытых закупок, где изделие полностью проходит ТЗ, нет; список обновляется каждый день.

Построчная сверка ТЗ с характеристиками этого изделия и все закупки под ваши товары — в кабинете, 7 дней бесплатно.
Попробовать бесплатно

Текст инструкции: технические характеристики

--- стр. 1 ---
У Т В Е Р Ж Д Е Н А 
П риказом  Росздравнадзора  
о'г 20  г. №
« У Т В Е Р Ж Д А Ю »
еральны й директор
'1 ^ щ В е к то р -Б е с т»
Х усаи нов 
f 3  2 0 12 г.
ИНСТРУКЦИЯ^
по применению набора реагентов 
для выявления ДНК вируса герпеса человека 6 тина 
методом полимеразной цепной реакции 
в режиме реального времени 
«РеалБест ДНК НГЧ-6»
(комплект 1)
1. НАЗНАЧЕНИЕ
Набор реагентов «РеалБест ДНК ВГЧ-6» предназначен для выявления ДНК вируса 
герпеса человека 6 типа методом полимеразной цепной реакции (НЦР) с гибридизационно- 
флуоресцентной детекцией продуктов НЦР в режиме реального времени.
Выделение ДНК из клинических проб проводится с помощью наборов; «РеалБест 
ДНК-экспресс», «РеалБест ДНК-экстракция 1», «РеалБест ДНК-экстракция 3» и  «РеалБест 
экстракция 100».
Комплект 1  предназначен для применения с регистрирующими амплификаторами 
планшетного типа «iQ iCycler», «iQ5 iCycler», «СРХ96» (фирма «Bio-Rad», США), «ДТ-96» 
(ООО «НПО ДНК-Технология», Россия) или их ана;югами.
Комплект 1  рассчитан на проведение анализа 48 образцов, включая контрольные 
образцы.
2. ХАРАКТЕРИСТИКА НАБОРА
2.1. Принцип метода.
Принцип анализа основан на регистрации процесса амплификации выбранного 
фрагмента ДНК, заключающегося в повторяющихся циклах: температурная денатурация, 
отжиг праймеров с комплементарными последовательностями, достройка полинуклео- 
тидных последовательностей с этих праймеров Taq ДПК-полимеразой.
В основе используемого метода регистрации лежит измерение сигналов флуорес-
Инструкция составлена сотрудниками ЗАО «Вектор-Бест»: Директором
по производству Ткачевым В.К. и иач. отделеиия производства ПЦР наборов Трухипой А.В.


--- стр. 2 ---
ценции в каждом цикле Г1ЦР. Увеличение сигналов флуоресценции происходит благода­
ря использованию специфичных для данных участков Д Н К  В Г Ч -6 гибридизационных  
ДНК-зондов, которые в ходе реакции связываются с одной из цепей Д И К , обеспечивая  
также дополнительную специфичность метода. Д Н К -зо н д  содержит на 5 ’ конце флуо­
ресцентный краситель, а на 3 ’ конце -  гаситель флуоресценции, значительно снижаю-  
1ЦИЙ интенсивность флуоресценции. В ходе полимеразного сиР 1теза комплементарной  
цепи, благодаря 5 ’-3 ’ нуклеазной активности Taq ДНК-полимеразы , зонд расщепляется с  
5 ’ конца и происходит разобщение красителя и гасителя, нриводян 1ее по мере накопле­
ния продукта реакции к возрастанию сигнала флуоресценции.
При этом измеряемая интенсивность флуоресценции зависит от количества образо­
вавшихся специфических ампликонов и динамика нарастания флуоресценции определя­
ется исходным количеством Д Н К  возбудителя инфекции в образце.
Достоверность анализа контролируется но наличию положительного результата в  
образце П К О , который подвергается процедуре выделения Д Н К  вместе с анализируемы­
ми биопробами.
Учет эффективности выделения Д Н К  В ГЧ -6 из образцов обеспечивается выделени­
ем Д Н К  из клинических проб совместно с предварительно внесенным внутренним кон­
трольным образцом (В К О ).
2.2. Состав набора:
-  положительный контрольный образец (П К О ) -  на ос 1юве плазмидной Д Н К  со  
встройкой фрагментов Д Н К  В Г Ч -6 -  1  пробирка (1,0 мл);
-  готовая реакционная смесь для Н Ц Р  (ГР С ), лиофилизированная -  48 пробирок (6  
стрипов по 8 пробирок).
Набор дополнительно комплектуется:
-  стрипированными крыщками для пробирок (6 стрипов по 8 щ тук) или оптической  
плёнкой -  1  лист.
3. АНАЛИТИЧЕСКИЕ И ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
3.1. Чувствительность -  определение 100 копий Д Н К  В ГЧ -6 в пяти образцах, приго­
товленных из Стандартного образца предприятия (С О Н ) Д Н К  В ГЧ -6 -  100 %.
3.2. Специфичность определения Д Н К  В ГЧ -6 (по стандартной nancjm отрицательных  
сывороток предприятия, С П И  О К С ) -  100 %.
4. МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖ НОСТИ
Внимание! HccoGjHOAenne приведённых ниже требований может нривесги к  
искажению результагов НЦР.


--- стр. 3 ---
4.1. Потенциальный риск применения набора -  класс 26 (Г О С Т  Р 51609-2000).
4.2. При работе с набором следует соблюдать С П  1.3.2322-08 «Безонасность работы с  
микроорганизмами II1-1V групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных  
болезней».
4.3. Для предотвращения контаминации необходимо территориально разделять этагн .1 
выделения Д Н К  и постановки П Ц Р  согласно М У  1.3. 2569-09 «Организация работы лабора­
торий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот нри работе с материалом,  
содержащим микроорганизмы 1-IV групп патогенности».
4.4. При работе с набором следует надевать одноразовые медицинские перчатки.
4.5. Каждое рабочее место должно быть снабжено собственным набором пипеток пе­
ременного объема, необходимыми вспомогательными материалами и оборудованием. За­
прещается их перемещение между рабочими местами.
4.6. Для проведения реакции амплификации с детекцией продуктов П Ц Р в режиме ре-  
ajHjHoro времени необходимо использовать только одноразовые наконечники с фильтром для  
пинеток.
4.7. Не допускается использование одних и тех же наконечников при добавлении раз­
ных образцов.
4.8. После окончания работ для предотвран 1ения контаминации рабочие поверхности  
ламинарных боксов и лабораторных столов следует подвергнуть действию бактерицидных  
У Ф  ламп в течение 1  часа. Затем обработать регламентированными санитарными правилами  
дезинфицируюнщми средствами (такими, как: 0,2%  раствор Д П -2 Т ; 1-3% раствор «Диабак»;
0,5%  раствор «Лизафин»; 0,5-1%  раствор «Мистраль»).
4.9. Все использованные одноразовые материалы подвергать обработке дезинфици­
рующими средствами с последующей утилизацией.
5. О Б О Р У Д О В А Н И Е  И  М А Т Е Р И А Л Ы
-  амплификатор с флуоресцентной детекцией в режиме рсалыюго времени:
«iQ iCycler», «iQ 5 iCycler», «С Р Х 96» (фирма «Bio-Rad», С Ш А ), «Д Т -96» (О О О  «Н П О  
Д Н К-Технология», Россия) или их аналог;
-  ламинарный бокс П -го класса биологической защиты, предназначенный для ра­
боты с инфекци 01н1ым материалом (фирма «Ламинарные системы», Россия);
-  холодильник бытовой, поддерживающий температуру от 2 до 8°С;
-  микроцентрифуга типа «Eppendorf M iniSpin» (фирма «Eppendorf», Германия);
-  пипетки полуавтоматические (дозаторы механические) одноканальные с пере­
менным объемом, со сменными наконечниками (фирма «Biohit», Финляндия);


--- стр. 9 ---
У Т В Е Р Ж Д Е Н А  « У 'Г В Е Р Ж Д А Ю »
П риказом  Росздравнадзора ___  Генеральны й директор
о т________________20 г. №  ,У ^^< о ^ -Д ^ ? Ш ».«В екго п -Б е с т»
М .Д . Х усаи нов
C S 20 12 г.
X ' % ■  " O iip e v H
ИНСТ1% Й
по применению набора реагентов  
для выявления Д Н К  вируса герпеса человека 6 типа  
методом полимеразной цепной реакции  
в режиме реального времени  
«РсалБест Д Н К  В Г Ч -6 »
(ко м п л е кт 2)
1. Н А З Н А Ч Е Н И Е
Набор реагентов «РеалБест Д Н К  В Г Ч -6» предназначен для выявления Д Н К  вируса  
герпеса человека 6 типа методом полимеразной цепной реакции (Н Ц Р ) с гибридизационпо-  
флуоресцентной детекцией продуктов Н Ц Р  в режиме реального времени.
Выделение Д Н К  из клинических проб проводится с помощью наборов: «РеалБест  
ДНК-экспресс», «РеалБест Д Н К-экстракция 1», «РеалБест Д Н К-экстракция 3» и «РеалБест  
экстракция 100».
Комплект 2 предназначен для применения с регистрирующими амплификаторами как  
роторного типа: «Rotor-Gene 3000», «Rotor-Gene 6000» (фирма Corbett Research, Австралия).  
«Rotor-Gene Q » (фирма Qiagen, Германия), так и планшетного типа: «iQ iCycler», «iQ5  
iCycler», «С РХ96» (фирма Bio-Rad, С Ш А ), «Д Т-96» (О О О  « Н П О  Д Н К-Технология», Россия)  
или их аналогами.
Комплект 2 рассчитан на проведение анализа 50 образцов, включая контрольные  
образцы.
2. Х А Р А К Т Е Р И С Т И К А  Н А Б О Р А
2 .Г Принцип метода.
Принцип анализа основан на регистрации процесса амплификации выбранного  
фрагмента Д Н К , заключающегося в повторяющихся циклах: температурная денатурация,  
отжиг праймеров с комплементарными последовательностями, достройка 1Юлинуклео-
Инструкция составлена сотрудниками ЗАО «Вектор-Бест»: Директором
по производству Ткачевым В.К. и нач. отделения производства ПЦР наборов Трухиной А. В .


--- стр. 10 ---
тидных последовательностей с этих праймеров Taq ДНК-полимеразой.
В основе используемого метода регистрации лежит измерение сигналов флуорес­
ценции в каждом цикле П Ц Р . Увеличение сигналов флуоресценции происходит благода­
ря использованию специфичных для данных участков Д Н К  В Г Ч -6 гибридизационных  
ДНК-зондов, которые в ходе реакции связываются с одной из цепей Д Н К , обеспечивая  
также дополнительную специфичность метода. Д Н К -зо н д  содержит на 5 ’ конце флуо­
ресцентный краситель, а на 3 ’ конце -  гаситель флуоресценции, значительно снижаю­
щий интенсивность флуоресценции. В ходе полимераз 1Юго синтеза комплементарр 1ой 
цепи, благодаря 5 ’-3 ’ нуклеазной активности Taq ДНК-полимеразы , зонд расп 1епляется с  
5’ конца и происходит разобщение красителя и гасителя, приводян 1ее по мере накопле­
ния продукта реакции к возрастанию сигнала флуоресценции.
При этом измеряемая интенсивность флуоресценции зависит от количества образо-  
вавпшхся специфических ампликонов и динамика нарастания флуоресценции определя­
ется исходным количеством Д Н К  возбудителя инфекции в образце.
Достоверность анализа контролируется по наличию положительного результата в  
образце П К О , который подвергается процедуре выделения Д Н К  вместе с анализируемы­
ми биопробами.
Учет эффективности выделения Д Н К  В ГЧ -6 из образцов обеспечивается выделени­
ем Д Н К  из клинических проб совместно с предварительно внесенным внутренним кон­
трольным образцом (В К О ).
2.2. Состав набора:
-  положительный контрольный образец (Н К О ) -  на основе плазмидной Д Н К  со  
встройкой фрагментов Д Н К  В Г Ч -6 -  1  пробирка (1,0 мл);
-  реакционная смесь для П Ц Р  (PC ), лиофилизированная -  5 пробирок, каждая на 10  
определений;
-  раствор для восстановления (РВ ) -  2 флакона (по 2,0 мл).
3. АНАЛИТИЧЕСКИЕ И ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
3.1. Чувствительность -  определение 100 копий Д Н К  В ГЧ -6 в пяти образцах, приго-  
товлен 1п.1х из Стандартного образца предприятия (С О Н ) Д Н К  В Г Ч -6 -  100 %.
3.2. Специфичность определения Д Н К  В ГЧ -6 (по стандартной панели отрицательных  
сывороток предприятия, СНГ! О К С ) -  100 %.
4. МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖ НОСТИ
Внимание! Н есоблюдение приведённых ниже требований может привести к  
искажению результатов НЦР.


--- стр. 11 ---
4.1. Потенциальный риск применения н аб о р а -кл а сс 26 (ГО СТ' Р 51609-2000).
4.2. При работе с набором следует соблюдать С П  1.3.2322-08 «Безопасность работы с  
микроорганизмами I11-1V групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных  
болезней».
4.3. Для предотвран 1ения контаминации необходимо территориально разделять этапы  
выделения Д П К  и постановки П Ц Р  согласно М У  1.3. 2569-09 «Организация работы лабора­
торий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом,  
содержащим микроорганизмы 1-IV групп патогенности».
4.4. При работе с набором следует надевать одноразовые медицинские перчатки.
4.5. Каждое рабочее место должно быть снабжено собственным набором пипеток пе­
ременного объема, необходимыми вспомогательными материалами и оборудованием. За-  
преп 1,ается их перемещение между рабочими местами.
4.6. Для проведения реакции амплификации с детекцией продуктов П Ц Р  в режиме ре­
ального времени необходимо использовать только одноразовые наконечники с фильтром для  
пипеток.
4.7. Не допускается использование одних и тех же наконечников при добавлении раз­
ных образцов.
4.8. После окончания работ для предотвращения контаминации рабочие поверхности  
ламинарных боксов и лабораторных столов следует подвергнуть действию бактерицидных  
У Ф  ламп в течение 1  часа. Затем обработать регламентированными санитарными правилами  
дезинфицирующими средствами (такими, как: 0,2%  раствор Д П -2 Т ; 1-3% раствор «Диабак»;
0,5%) раствор «Лизафин»; 0,5-1%) раствор «Мистраль»).
4.9. Все использованные одноразовые материалы подвергать обработке дезинфици­
рующими средствами с последующей утилизацией.
5. О Б О Р У Д О В А Н И Е  И  М А Т Е Р И А Л Ы
-  амплификатор с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени роторного  
типа; «Rotor-Gene 3000», «Rotor-Gene 6000» (фирма Corbett Research, Австралия), «Rotor-  
Gene Q » (фирма Qiagen, Германия) или планщетного типа: «iQ  iCycler», «iQ5 iCycler»,  
«C FX 96» (фирма Bio-Rad, С Ш А ), «Д Т -96 » (О О О  « Н П О  Д П К-Технол огия», Россия) или их 
аналюг;
-  ламинарный бокс 11-го класса биологической защиты, предназначенный для ра­
боты с инфекционным материалом (фирма «Ламинарные системы», Россия);
-  холодильник бытовой, поддерживающий температуру от 2 до 8°С;
-  микроцентрифуга типа «Eppendorf M iniSpin» (фирма «Eppendorf», Германия);


--- стр. 17 ---


--- стр. 18 ---
УТВЕРЖДЕ1 lA «УТВЕРЖДАЮ»
Приказом Росздравнадзора Г е н е ^ 1ьный директор
о т ______________20_ _г. № ________
М.Д. Хусаинов 
2012 г.
ИИСТРУК!
по применению набора реагентов  
для выявления Д Н К  вируса герпеса человека 6 типа  
методом полимеразной цепной реакции  
в режиме реаги>ного времени  
«РеалБ естД Н К  ВГЧ-6»
(комплект 1)
1. НАЗНАЧЕНИЕ
Набор реагентов «РеалБест Д Н К  В ГЧ -6» предназначен для выявления Д Н К  вируса  
герпеса человека 6 типа методом полимеразной цепной реакции (Н Ц Р ) с гибридизационно-  
флуоресцентной детекцией продуктов Н Ц Р  в режиме реального времени.
Выделение Д Н К  из клинических проб проводится с помоп 1ью наборов: «РеалБест  
ДНК-экспресс», «РеалБест Д Н К-экстракция 1», «РеалБест Д Н К-экстракция 3» и «РеалБест  
экстракция 100».
Комплект 1  предназначен для применения с регистрирующими амплификаторами  
планшетного типа «iQ  iCycler», «iQ5 iCycier», «С Р Х 96» (фирма «Bio-Rad», С Ш А ), «Д Т-96»  
(О О О  «Н П О  Д Н К-Техно л оги я», Россия) или их анагюгами.
Комплект 1  рассчитан на проведение анализа 48 образцов, включая контрольные  
образцы.
2. ХАРАКТЕРИСТИКА НАБОРА
2.1. Принцип метода.
Принцип анализа основан на регистрации процесса амплификации выбранного  
фрагмента Д Н К , заключаюн 1егося в повторяюишхся циклах: температурная денатурация,  
отжиг праймеров с комплементарными последовательностями, достройка полинуклео-  
тидных последовательностей с этих праймеров Taq ДНК-полимеразой.
В основе используемого метода регистрации лежит измерение сигнагюв флуорес-
Инструкция составлена сотрудниками ЗАО «Вектор-Бест»: Директором
по производству Ткачевым В.К. и иач. omdenetiun производства ПЦР наборов Трухииой А. В.


--- стр. 19 ---
ценции в каждом цикле МЦР. Увеличение сигналов флуоресценции происходит благода­
ря использованию специфичных для данных участков Д Н К  В Г Ч -6 гибридизацио 1ты х 
ДПК-зондов, которые в ходе реакции связываются с одной из цепей Д Н К , обеспечивая  
также дополнительную специфичность метода. Д Н К -зо н д  содержит на 5 ’ конце флуо­
ресцентный краситель, а на 3 ’ конце -  гаситель флуоресценции, значительно снижаю­
щий интенсивность флуоресценции. В ходе полимеразного синтеза комплементарной  
цепи, благодаря 5 ’-3 ’ нуклеазной активности 'I'aq ДНК-полимеразы , зонд расщепляется с  
5 ’ конца и происходит разобщение красителя и гасителя, приводяи 1ее по мере накопле­
ния продукта реакции к возрастанию сигнала флуоресценции.
При этом измеряемая интенсивность флуоресценции зависит от количества образо­
вавшихся специфических ампликонов и динамика нарастания флуоресценции определя­
ется исходным количеством Д Н К  возбудителя инфекции в образце.
Достоверность анализа ко 1ггролируется по наличию положительного результата в  
образце Н К О , который подвергается процедуре выделения Д Н К  вместе с анализируемы­
ми биопробами.
Учет эффективности выделения Д Н К  В ГЧ -6 из образцов обеспечивается выделени­
ем Д Н К  из клинических проб совместно с предварительно внесенным внутренним кон­
трольным образцом (В К О ).
2.2. Состав набора:
-  положительный контрольный образец (Н К О ) -  на основе плазмидной Д Н К  со  
встройкой фрагментов Д Н К  В ГЧ -6 -  1  пробирка (1,0 мл);
-  готовая реакцио 1т а я  смесь для Н Ц Р  (1'РС), лиофилизированная -  48 пробирок (6  
стрипов по 8 пробирок).
Набор дополнительно комплектуется:
-  стрипироваш 1ыми крышками для пробирок (6 стрипов по 8 ш тук) или оптической  
плёнкой -  1  лист.
3. АНАЛИТИЧЕСКИЕ И ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
3.1. Чувствительность -  определение 100 копий Д Н К  В ГЧ -6 в пяти образцах, приго­
товленных из Стандартного образца предприятия (С О Н ) Д Н К  В Г Ч -6 -  100 %.
3.2. Специфичность определения Д Н К  В ГЧ -6 (по стандартной панели отрицательных  
сывороток предприятия, С Н Н  О К С ) -  100 %.
4. МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖ НОСТИ
Внимание! Несоблюдение приведённых ниже требований может привести к  
искажению результатов НЦР.


--- стр. 20 ---
4.1. Потенциальный риск применения набора -  класс 26 (Г О С Т  Р 51609-2000).
4.2. При работе с набором следует соблюдать С П  1.3.2322-08 «Безопасность работы с  
микроорганизмами I1 I-IV  групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных  
болезней».
4.3. Для предотвран 1ения контаминации необходимо территориально разделять этапы  
выделения Д Н К  и постановки П Ц Р  согласно М У  1.3. 2569-09 «Организация работы лабора­
торий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом,  
содержащим микроорганизмы 1-IV групп патогенности».
4.4. При работе с набором следует надевать одноразовые медицинские перчатки.
4.5. Каждое рабочее место должно быть снабжено собственным набором пипеток пе-  
ремещюго объема, необходимыми вспомогательными материалами и оборудованием. За-  
препщется их перемещение между рабочими местами.
4.6. Для проведения реакции амплификации с детекцией продуктов П Ц Р в режиме ре­
ального времени необходимо использовать только одноразовые наконечники с фильтром для  
пипеток.
4.7. Пе допускается использование одних и тех же наконечников при добавлении раз­
ных образцов.
4.8. После окончания работ для предотвращения контаминации рабочие поверхности  
ламинарных боксов и лабораторных столов следует подвергнуть действию бактерицидных  
У Ф  ламп в течение 1  часа. Затем обработать регламентированными санитарными правилами  
дезинфицирующими средствами (такими, как: 0,2%  раствор Д П -2 Т ; 1-3%  раствор «Диабак»;  
0,5%  раствор «Лизафин»; 0,5-1%  раствор «Мистраль»).
4.9. Все использованные одноразовые материалы подвергать обработке дезинфици-  
руюпщми средствами с последующей утилизацией.
5. О Б О Р У Д О В А Н И Е  И  М А Т Е Р И А Л Ы
-  амплификатор с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени:
«1Q iCycler», «iQ 5 iCycler», «С Р Х 96» (фирма «Bio-Rad», С Ш А ), «Д Т -96» (О О О  «Н П О 
ДП К-Технология», Россия) или их аналог;
-  ламинарный бокс П-го класса биологической защиты, предназначенный для ра­
боты с инфекционным материалом (фирма «Ламинарные системы», Россия);
-  холодильник бытовой, поддерживающий температуру от 2 до 8°С;
-  микроцентрифуга типа «Eppendorf M iniSpin» (фирма «Eppendorf», Германия);
-  пипетки полуавтоматические (дозаторы механические) однокана;п,ные с пере­
менным объемом, со сменными наконечниками (фирма «Biohit», Финляндия);


--- стр. 25 ---


--- стр. 26 ---
У Т В Е Р Ж Д Е Н А  
11 р и к а з о м  Р о с з д р а в и а д з о р а  
о т  2 0  г . №
« У Т В Е Р Ж Д А Ю »
Г е н е р а л ь н ы й  д и р е к т о р  
;;^оиЕРнй^^^^Щ ^ктор-Бест»
М . Д .  Х у с а и н о в  
2012 г.
по применению набора реагентов 
для выявления ДНК вируса герпеса человека 6 типа 
методом полимеразной цепной реакции 
в  режиме реального времени 
«РеалБест ДНК ВГЧ-6»
(комплекг 2)
1. НАЗНАЧЕНИЕ
Набор реагентов «РеалБест ДНК ВГЧ-6» предназначен для выявления ДНК вируса 
герпеса человека 6 типа методом полимеразной цепной реакции (НЦР) с гибридизационно- 
флуоресцентной детекцией продуктов НЦР в  режиме реального времени.
Выделение ДНК из клинических проб проводится с помощью наборов: «РеалБест 
ДНК-экспресс», «РеалБест ДНК-экстракция 1», «РеалБест ДНК-экстракция 3» и  «РеалБест 
экстракция 100».
Комплект 2 предназначен для применения с регистрируюишми амплификаторами к ак 
роторного типа: «Rotor-Gene 3000», «Rotor-Gene 6000» (фирма Corbett Research, Австралия), 
«Rotor-Gene Q» (фирма Qiagen, Германия), так и  планшетного типа: «iQ iCycler», «iQ5  
iCycler», «СГХ96» (фирма Bio-Rad, США), «ДТ-96» (ООО «НПО ДНК-Технология», Россия) 
или их аналогами.
Комплект 2 рассчитан на проведение анализа 50 образцов, включая контрольные 
образцы.
2. ХАРАКТЕРИСТИКА НАБОРА
2.1. Принцип метода.
Принцип анализа основан на регистрации процесса амплификации выбранного 
фрагмента ДНК, заключающегося в  повторяюпщхся циклах: температурная денатурация, 
отжиг праймеров с комплементарными последовательностями, достройка полинуклео-
Ииструщия составлена сотрудниками ЗАО «Вектор-Бест»: Директором
по производству Ткачевым В. К. и нач. отделения производства ПЦР наборов Трухипой Л.В.


--- стр. 27 ---
тидиых последовательностей с этих праймеров Taq ДНК-полимеразой.
В  основе используемого метода регистрации лежит измерение сигналов флуорес­
ценции в  каждом цикле ИЦР. Увеличение сигналов флуоресценции происходит благода­
ря использованию специфичных для данных участков ДНК ВГЧ-6 гибридизационных 
ДНК-зондов, которые в  ходе реакции связываются с одной из цепей ДНК, обеспечивая 
также дополнительную специфичность метода. ДНК-зонд содержит на 5’  конце флуо­
ресцентный краситель, а на 3’  конце -  гаситель флуоресценции, значительно снижаю­
щ ий интенсивность флуоресценции. В ходе полимеразного синтеза комплементарной 
цепи, благодаря 5’-3’  нуклеазной активности Taq ДНК-полимеразы, зонд расщепляется с 
5’  конца и  происходит разобп1епие красителя и  гасителя, приводящее по мере накопле­
ния продукта реакции к  возрастанию сигнала флуоресценции.
П ри этом измеряемая интенсивность флуоресценции зависит от количества образо­
вавшихся специфических ампликонов и  динамика нарастания флуоресценции определя­
ется исходным количеством ДНК возбудителя инфекции в  образце.
Достоверность анализа контролируется по наличию ноложигельного результата в 
образце НКО, который подвергается процедуре выделения ДНК вместе с анализируемы­
ми биопробами.
Учет эффективности выделения ДНК Г)ГЧ -6 из образцов обеспечивается выделени­
ем ДНК из клинических проб совместно с предварительно внесенным внутренним кон­
трольным образцом (ВКО).
2.2. Состав набора:
-  положительный контрольный образец (НКО) -  на основе плазмидной ДНК со  
встройкой фрагментов ДНК ВГЧ-6 -  1  пробирка (1,0 мл);
-  реакционная смесь для НЦР (PC), лиофилизироватшя -  5 пробирок, каждая на К ) 
определений;
-  раствор для восстановления (РВ) -  2 флакона (гю 2,0 мл).
3. АНАЛИТИЧЕСКИЕ И  ДИАГ НОСТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
3.1. Чувствительность -  определение 100 копий ДНК ВГЧ-6 в  пяти образцах, приго­
товленных из Стандартного образца предприятия (СОН) ДНК ВГЧ-6 -  100 % .
3.2. Специфичность определения ДНК ВГЧ-6 (по стандартной панели отрицательных 
сывороток предприятия, СП11  ОКС) -  100 % .
4. МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ
Внимание! Несоблюдение иривсдённых ниже требований может привести к  
искажению результатов ПЦР.


--- стр. 28 ---
4.1. Потенциальный риск применения набора -  класс 26 (Г ’ О С 'Г Р  51609-2000).
4.2. При работе с набором следует соблюдать СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с 
микроорганизмами I11-IV  групп патогенности (опасности) и  возбудителями паразитарных 
болезней».
4.3. Для предотвращения контаминации необходимо территориально разделять этапы 
выделения ДПК и  постановки ПЦР согласно МУ 1.3. 2569-09 «Организация работы лабора­
торий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, 
содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности».
4.4. При работе с набором следует надевать одноразовые медицинские перчатки.
4.5. Каждое рабочее место должно быть снабжено собственным набором пипеток пе­
ременного объема, необходимыми вспомогательными материалами и  оборудованием. За­
прещается их перемен1ение между рабочими местами.
4.6. Для проведения реакции амплификации с детекцией продуктов ПЦР в  режиме ре- 
a jH > H o ro  времени необходимо использовать только одноразовые наконечники с фильтром для 
пипеток.
4.7. Пе допускается использование одних и  тех же наконечников при добавлении раз­
ных образцов.
4.8. После окончания работ для предотврап1ения контаминации рабочие поверхности 
ламинарных боксов и лабораторных столов следует подвергнуть действию бактерицидных 
УФ ламп в  течение 1  часа. Затем обработать регламентированными санитарными правилами 
дезинфицирующими средствами (такими, как: 0,2% раствор ДП-2Т; 1-3%  раствор «Диабак»;
0,5% раствор «Лизафин»; 0,5-1% раствор «Мистраль»).
4.9. Все использованные одноразовые M aT epn ajH ii подвергать обработке дезинфици- 
руюнщми средствами с гюследуюн1ей утилизацией.
5. ОБОРУДОВАНИЕ И  МАТЕРИАЛЫ
-  амплификатор с флуоресцентной детекцией в  режиме реального времени роторного 
тина: «Rotor-Gene 3000», «Rotor-Gene 6000» (фирма Corbett Research, Австралия), «Rotor- 
Gene Q» (фирма Qiagen, Германия) или плантетного типа: «iQ iCycler», «iQ5 iCycler»,  
«СРХ96» (фирма Bio-Rad, США), «ДТ-96» (ООО «НПО ДПК-Технология», Россия) или их 
anajm r;
-  ламинарный бокс П-го класса биологической защиты, предназначенный для ра­
боты с инфекционным мaтepиaJЮ м (фирма «Ламинарные системы», Россия);
-  холодильник бытовой, поддерживаюпщй температуру от 2 до 8°С;
-  микроцентрифуга типа «Rppendorf MiniSpin» (фирма «Eppendorf», Германия);